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目录
主要符号对照表
第一章引言
1.1 蜱的概述
1.2 硬蜱唾液腺的生物学特性
1.2.1 硬蜱唾液腺的结构和功能
1.2.2 硬蜱唾液腺的退化
1.3 蜕皮激素和蜕皮激素受体
1.3.1 蜕皮激素
1.3.2 蜕皮激素受体
1.4 节肢动物中的蜕皮激素受体的研究进展
1.4.1 黑腹果蝇中蜕皮激素受体调控程序性死亡的研究进展
1.4.2 棉铃虫中的蜕皮激素受体调控程序性死亡的研究进展
1.5 蜱蜕皮激素受体的研究进展
1.6 本研究的目的意义
第二章镰形扇头蜱唾液腺蜕皮激素受体的克隆与鉴定
2.1 引言
2.2 材料与方法
2.2.1 试验动物
2.2.2 试验试剂
2.2.3 试验仪器
2.3 试验方法
2.3.1 不同吸血时间点镰形扇头蜱雌蜱唾液腺总 cDNA 的合成
2.3.2 功能性蜕皮激素受体基因的克隆
2.3.3 功能性蜕皮激素受体相关基因的序列分析
2.4 试验结果
2.4.1 功能性蜕皮激素受体基因的克隆
2.4.2 功能性蜕皮激素受体基因的鉴定
2.5 结果与讨论
第三章功能性蜕皮激素受体的表达特征和对蜱生物学的影响
3.1 引言
3.2 试验材料
3.2.1 试验动物
3.2.2 试验试剂
3.2.3 试验仪器
3.3 试验方法
3.3.1 不同时间不同组织基因转录水平的相对表达
3.3.2 不同时间不同组织基因翻译水平的相对表达
3.3.3 雌蜱唾液腺和血淋巴中 20E 的动态变化
3.3.4 雌蜱体内 RhEcR 的 RNA 干扰
3.4 试验结果
3.4.1 RhEcR 多克隆抗体的鉴定
3.4.2 不同时间不同组织 RhEcR 和 RhUSP 的动态表达
3.4.3 雌蜱唾液腺和血淋巴中 20E 的动态变化
3.4.4 RhEcR 基因的 RNA 干扰抑制雌蜱的吸血和生长
3.4.5 RhUSP 基因的 RNA 干扰对蜱的吸血、生长繁殖无明显影响
3.4.6 唾液腺中 RhEcR 基因和 RhUSP 基因敲低的检测
3.4.7 RhEcR 基因和 RhUSP 基因敲低后蜱的生物学特征
3.4.8 功能性蜕皮激素受体基因被敲低后唾液腺形态的变化
3.5 结果与讨论
第四章蜕皮激素受体在蜱唾液腺退化中的作用研究
4.1 引言
4.2 试验材料
4.2.1 试验动物
4.2.2 试验试剂
4.2.3 试验仪器
4.3 试验方法
4.3.1 雌蜱体内RhEcR的RNA干扰
4.3.2 吸血过程中不同时间点唾液腺中不同基因的转录水平表达
4.3.3 雌蜱唾液腺饱血前后的蛋白质组学研究
4.3.4 雌蜱唾液腺饱血前后的转录组学
4.3.5 雌蜱唾液腺透射扫描电镜观察
4.4 试验结果
4.4.1 RhEcR 基因的敲低抑制细胞凋亡通路相关分子的表达
4.4.2 雌蜱饱血前后唾液腺的蛋白质组学研究
4.4.3 RhEcR 基因敲低后唾液腺的蛋白质组学
4.4.4 RhEcR 基因敲低后唾液腺转录组学
4.4.5 RhEcR 基因敲低后唾液腺的超显微结构
4.5 结果与讨论
第五章 RhFOXO介导唾液腺退化的分子机制研究
5.1 引言
5.2 试验材料
5.2.1 试验动物
5.2.2 试验试剂
5.3 试验方法
5.3.1 RhFOXO 基因的克隆
5.3.2 RhFOXO 基因的序列分析
5.3.3 雌蜱 RhFOXO 基因的 RNA 干扰
5.3.4 唾液腺组织的石蜡切片及 HE 染色
5.3.5 唾液腺中相关基因的转录表达分析
5.4 试验结果
5.4.1 RhFOXO 基因的克隆与鉴定
5.4.2 RhFOXO 基因的 RNA 干扰延缓雌蜱的吸血和生长
5.4.3 RhFOXO 基因敲低后对蜱的生物学影响
5.4.4 RhFOXO 基因的敲低延缓了雌蜱唾液腺的退化
5.4.5 RhFOXO 基因的敲低抑制细胞凋亡通路相关分子表达
5.5 结果与讨论
第六章蜕皮激素受体在哺乳动物细胞中的相互作用
6.1 引言
6.2 试验材料
6.2.1 试验细胞
6.2.2 试验试剂
6.2.3 试验仪器
6.3 试验方法
6.3.1 体外培养 HEK-293T 细胞系
6.3.2 真核重组质粒的共转染
6.3.3 荧光显微观察
6.4 试验结果
6.4.1 RhEcR 和 RhUSP 的相互作用
6.4.2 GFP-RhEcR 和 mCherry-RhUSP 共转染 HEK-293T
6.4.3 RhEcR1 和 RhUSP1 引起 HEK-293T 的死亡
6.4.4 RhEcR1 和 RhUSP1 促进 HEK-293T 发生凋亡
6.5 结果和讨论
第七章全文总结
参考文献
致谢
作者简历